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FEA Unicamp

Multiuser/FAPESP

School of Food Engineering at Unicamp

EMU 2020/14683-6

EMU granted under Process 2020/14683-6: FTIR Infrared Spectroscopy Equipment, Agilent brand, Cary 630 model.

The multiuser FTIR infrared spectroscopy equipment is linked to the FAPESP Thematic Project – Process 2020/14683-6, under the responsibility of Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles.
Within the scope of the FAPESP Thematic Project, the FTIR equipment will be used:
i) for the characterization analysis of ionic liquids (ILs) to determine synthesis efficiency and confirm the structures formed;
ii) to monitor the chemical stability of ILs during storage, application in aqueous media, or after use in extraction processes;
iii) to indirectly confirm the existence of hydrogen bonds between the two components of a mixture (generally a quaternary ammonium salt with a hydrogen bond donor), ensuring the formation of Deep Eutectic Solvents (DES);
iv) to compare extraction processes using DES and/or another solvent, evaluating the spectra of the raffinates and the extraction potential;
v) for the characterization of ion-exchange resins used for the deacidification and/or transesterification of vegetable oils at different stages of the processes.

FTIR Infrared Spectroscopy Equipment, Agilent brand, Cary 630 model, with ZnSe window, wavelength range between 640 and 4400 cm-1, with ATR sample holder accessories with temperature control and DialPath with optical path options between 30 and 100 microns.


The software for processing FTIR spectra are MicroLab Expert and MicroLab Expert Base+Quant.

 

The prior restrictions on sample conditions are related to the type of sample holder:

DialPath (ZnSe): pH must be between 5 and 9.

ATR (diamond): pH must be between 0 and 14.

A fee will be charged for equipment maintenance, calculated according to the number of samples and equipment usage time.

The user must undergo prior training to operate the equipment, which will be scheduled according to the availability of the team responsible for the training.

The possibility of the EXTRAE laboratory performing analyses for the user will also be evaluated by the Management Committee.

The user must obligatorily mention the EMU Process number (EMU FAPESP 2020/14683-6) in the acknowledgments of published works containing data from analyses performed with the FTIR equipment.

The user must undergo prior training to operate the equipment, which will be scheduled according to the availability of the team responsible for the training.

The possibility of the EXTRAE laboratory performing analyses for the user will also be evaluated by the Management Committee.

A fee will be charged for equipment maintenance, calculated according to the number of samples and equipment usage time.

The user must obligatorily mention the EMU Process number (EMU 2020/14683-6) in the acknowledgments of published works containing data from analyses performed with the FTIR equipment.

Management Committee :

  •  Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles – FEA/UNICAMP
  •  Prof. Dr. Guilherme José Maximo – FEA/UNICAMP
  • Prof. Dr. Louise Emy Kurozawa – FEA/UNICAMP

User Committee:

  •  Prof. Dr. Eduardo Augusto Caldas Batista – FEA/UNICAMP
  • Prof. Dr. Klicia Araújo Sampaio – FEA/UNICAMP
  •  Prof. Dr. Marcus Bruno Soares Forte – FEA/UNICAMP

Principal Investigator
Prof. Dr. Antonio J. A. Meirelles – FEA/UNICAMP

Main Researchers
Christianne Elisabete da Costa Rodrigues – FZEA/USP
Pedro de Alcântara Pessôa Filho – EP/USP
Roberto de Campos Giordano – UFSCAR

Associate Researchers
Antonio José Gonçalves da Cruz – CCET/UFSCAR
Charlles Rubber de Almeida Abreu – EQ/UFRJ
Cintia Bernardo Gonçalves – FZEA/USP
Eduardo Augusto Caldas Batista – FEA/UNICAMP
Elias de Souza Monteiro Filho – IQ/UNESP
Felipe Fernando Furlan – CCET/UFSCAR
Fernando Antonio Cabral – FEA/UNICAMP
Fábio Rodolfo Miguel Batista – EEL/USP
Gisele Atsuko Medeiros Hirata – ICAQF/UNIFESP
Guilherme José Maximo – FEA/UNICAMP
Irede Angela Lucini Dalmolin – UTFPR
Jorge Fernando Brandão Pereira – FCFAR/UNESP
Klicia Araujo Sampaio – FEA/UNICAMP
Luis Alberto Follegatti Romero – EP/USP
Luiz Alberto Colnago – CNPDIA/EMBRAPA
Marcelo Perencin de Arruda Ribeiro – CCET/UFSCAR
Marcela Cravo Ferreira – FCA/UNICAMP
Mariana Conceição da Costa – FEQ/UNICAMP
Matthieu Tubino – IQ/UNICAMP
Oscar Zalla Sampaio Neto – UFMT
Rafael Mauricio Matricarde Falleiro – ICAQF/UNIFESP
Roberta Ceriani – FEQ/UNICAMP
Ruy de Sousa Júnior – CCET/UFSCAR
Simone Monteiro Silva – IQ/UNB

Participating Universities / Institutes
Centro de Ciências Exatas e de Tecnologia - CCET/UFSCAR
Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária - EMBRAPA
Escola de Engenharia de Lorena - EEL-USP
Escola de Química - EQ/UFRJ
Escola Politécnica da Universidade de São Paulo - EP/USP
Faculdade de Ciências Aplicadas – FCA/UNICAMP
Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Araraquara - FCFAR/UNESP
Faculdade de Engenharia de Alimentos - FEA/UNICAMP
Faculdade de Engenharia Química - FEQ/UNICAMP
Faculdade de Zootecnia e Engenharia de Alimentos - FZEA/USP
Instituto de Ciências Ambientais, Químicas e Farmacêuticas - ICAQF/UNIFESP
Instituto de Química - IQ/UNB
Instituto de Química - IQ/UNESP
Instituto de Química - IQ/UNICAMP
Universidade Federal de Mato Grosso - UFMT
Universidade Tecnológica Federal do Paraná - UTFPR

Laboratory of Extraction, Applied Thermodynamics and Equilibrium – EXTRAE

Faculty of Food Engineering – FEA
University of Campinas – UNICAMP

Prof. Dr. Eduardo Augusto Caldas Batista

Rua Monteiro Lobato, 80
ZIP 13083-862; Campinas – SP

Phone: +55 (19) 3521-4056

E-mail: eacbat@unicamp.br

EMU 09/54137-1

Aquisição de um analisador de distribuição de tamanho de partículas, um medidor de potencial zeta, um spray dryer e um sistema de cromatografia líquida de ultra alta pressão / espectrômetro de massa.

Through process no. 09/54137-1 of the FAPESP Multiuser Equipment Program (EMU), the following equipment was acquired: a particle size distribution analyzer, a zeta potential meter, a spray dryer, and an ultra-high-pressure liquid chromatography system/mass spectrometer. These instruments aim to foster innovation and advance research in Food Engineering, particularly in the areas of bioactive compound encapsulation, biofuels, and new materials.

Mastersizer
Equipment
Mastersizer: Particle size distribution analyzer.
Instrument based on laser incidence on the sample. From the refraction index of this light, measured by optical detectors, the particle or droplet size distribution is evaluated. This system offers high flexibility for working with emulsions, suspensions, and powders in the range of 0.02 to 2000 μm.

Technical specifications

  • Mastersizer (Malvern Instruments Ltd) – model 2000

  • Particle size range: 0.02 to 2000 μm

  • Hydro 2000S manual sample dispersion unit (particle dispersion in liquids, 50 to 120 mL volume)

  • Scirocco 2000 automatic dry dispersion unit (dry powder analysis)

Zetasizer
Equipment
Zetasizer: Zeta potential meter with coupled light scattering.
This instrument combines three techniques: Dynamic Light Scattering (DLS), Static Light Scattering (SLS), and zeta potential. It can be applied to concentrated solutions, as it is a non-invasive technique. It allows estimation of the molecular mass of biopolymers. Automatic measurement of zeta potential, size, and intensity (with the appropriate Zetasizer) as a function of pH, conductivity, or additive concentration.

Technical specifications

  • Zetasizer (Malvern Instruments Ltd) – model Nano ZS

  • Particle/droplet size range: 0.6 nm to 9 μm

  • Zeta potential measurement range: 3.8 nm to 100 μm

  • Measurement angles: 12.8° and 175° (using water as dispersant)

  • Temperature range: 0°C to 90°C (70°C max. with capillary cell DTS1060)

  • Includes Multi-Purpose Titrator MPT-2

Spray Dryer
Equipment
Spray dryer: Equipment used to convert foods from liquid or paste state into powder. A spray nozzle atomizes the material into a chamber that receives compressed hot air, promoting immediate drying of the droplets and transforming them into solid particles.

Technical specifications

  • Spray Dryer (Lab-Plant UK Ltd) – model SD-06

  • Drying air temperature: 40 to 250°C

  • Feed flow: peristaltic pump with variable flow up to 32 mL/min

  • Spray/hot air flow: co-current, downward

  • Dry air circulation: variable, 100 to 300 m³/h

  • Compressor: 2.0 m³/h @ 2.0 bar / 1.7 m³/h @ 4.0 bar

  • Water evaporation capacity: approx. 1500 mL/h at 250°C inlet temperature

  • Spray nozzle with 0.5 mm orifice

UPLC-MS
Equipment
UPLC-MS: Ultra-high-pressure liquid chromatography system coupled with a mass spectrometer.
The UPLC system includes an autosampler with temperature control, column oven, diode array detector, column testing system, and two columns. The mass spectrometer has an interface for liquid chromatography, electrospray ionization system, option for atmospheric pressure chemical ionization, quadrupole mass analyzer, turbomolecular pump, photomultiplier detector, and nitrogen generator.

Technical specifications

  • UPLC-MS (Waters) – model ACQUITY

  • Binary pumping system, up to 15,000 psi, programmable flow up to 2 mL/min

  • Automatic degasser

  • Mass filter: Single Quadrupole, 2–2000 amu

  • Ionization systems: API and electrospray

  • PDA detector

Management Committee

  • Prof. Dr. Carmen S. Fávaro Trindade – FZEA/USP

  • Prof. Dr. Kil Jin Park – FEAGRI/UNICAMP

  • Prof. Dr. Javier Telis Romero – IBILCE/UNESP

User Committee

  • Prof. Dr. Vânia Nicoletti – IBILCE/UNESP

  • Prof. Dr. Marcelo Menossi Teixeira – IB/UNICAMP

  • Prof. Dr. Paulo José do A. Sobral – FZEA/USP

Responsible
Prof. Dr. Míriam Dupas Hubinger – FEA/UNICAMP

Associates

  • Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Francisco Maugeri Filho – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Rosiane Lopes da Cunha – FEA/UNICAMP

Participants

  • Prof. Dr. Florencia Cecília Menegalli – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Flávia Maria Netto – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Lireny A. Guaraldo Gonçalves – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Adriana Z. Mercadante – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Fernando Antônio Cabral – FEA/UNICAMP

  • Prof. Dr. Carmen S. Fávaro Trindade – FZEA/USP

  • Prof. Dr. Javier Telis Romero – IBILCE/UNESP

Universities and Institutes

  • Faculty of Food Engineering – FEA/UNICAMP

  • Faculty of Animal Science and Food Engineering – FZEA/USP

  • São Paulo State University – IBILCE/UNESP

Prof. Dr. Míriam Dupas Hubinger
Rua Monteiro Lobato, 80
ZIP 13083-862; Campinas – SP
E-mail: mhub@fea.unicamp.br
Phone: +55 (19) 3521-4036
Fax: +55 (19) 3521-4027

EMU 2009/54119-3

Acquisition of a Gas Chromatograph-Mass Spectrometer (GC-MS) for the identification and quantification of compounds affecting food quality and health.

The GC-MS system was granted under FAPESP process 2009/54119-3 and is installed in the Food Chemistry Laboratory of the Department of Food Science, Faculty of Food Engineering (DCA-FEA-UNICAMP), under the responsibility of Prof. Neura Bragagnolo.

As a Multiuser Equipment (EMU), the instrument is operated by a trained research professional. Users are required to pay a fee for maintenance, replacement of gases, filters, and oil, as well as consumables necessary for proper operation. Payment is made via Funcamp. Analysis costs are provided upon request, and a budget is prepared based on the information submitted in the analysis request form. After budget approval, a project registration form must be completed for either research institutions or companies. Budgets are only provided after the completed request form is submitted.

The system consists of a gas chromatograph coupled to a mass spectrometer (GC-MS):

  • Gas Chromatograph: Shimadzu GC-2010A, with automatic injector AOC-5000 (split/splitless), configured for combined injections of liquid samples and headspace with the same hardware. Automatic flow and pressure controller.

    • Syringe volumes: 1.0 to 5.0 mL

    • Injection volumes: 0.1 to 5.0 mL

    • Rack for 98 × 2 mL vials (liquid samples)

    • Rack for 32 × 10 or 20 mL vials (headspace)

    • Heating chamber for 2, 10, or 20 mL vials with agitation, temperature control 30–200 °C

  • Mass Spectrometer: Shimadzu QP-2010 Ultra; electron impact ionization source (EI), energy 10–200 eV, ionization current 5–250 μA, selectable temperature 140–300 °C; quadrupole mass analyzer with pre-quadrupole. GCMS Solution software, version 2.7.

  • Cholesterol and cholesterol oxides in shrimp, fish, and meat: Separation on Rtx-5MS capillary column (30 m × 0.25 mm × 0.25 μm) with temperature programming (Figueiredo et al., J. Food Sci., 80, C1646, 2015).

  • Volatile compounds from lipid oxidation in shrimp, fish, and meat: Headspace solid-phase microextraction (HS-SPME) with DVB/CAR/PDMS fiber; separation on RTX-Wax column (30 m × 0.25 mm × 0.20 μm) (Souza & Bragagnolo, J. Agric. Food Chem., 62, 590, 2014).

  • Volatile compounds in cheese and yogurt: HS-SPME with DVB/CAR/PDMS fiber; separation on RTX-Wax column (30 m × 0.25 mm × 0.20 μm) (Domingos et al., Food Res. Int., 119, 793, 2019).

  • Volatile compounds in essential oils: Separation on Rtx-5MS capillary column (30 m × 0.25 mm × 0.25 μm) (Gonçalves et al., J. Med. Plant Res., 7, 1736, 2013).

To request a budget and analyses, please complete the form below and send it to emu3lqa@unicamp.br.
 
 
Users must pay a fee for maintenance, replacement of gases, filters, and oil, as well as consumables necessary for proper operation of the equipment. Payment is made via Funcamp. The cost of analyses is provided upon request, and the budget will be prepared based on the information provided in the analysis request form. After budget approval by the interested party, it will be necessary to complete a form to register the research project (for educational and research institutions) or the company. The budget will be provided only after submission of the completed analysis request form.

The Management Committee, composed of researchers Neura Bragagnolo (UNICAMP) and Lilian Regina Barros Mariutti (UNICAMP), is responsible for evaluating requests for equipment use upon submission of the required documents.

The Users Committee, composed of researchers Walkiria H. Viotto (UNICAMP) and Valdecir Luccas (ITAL), is responsible for the continuous monitoring of users.

For more information, contact emu3lqa@unicamp.br.

EMU 04091498

HPLC/QToF-MS (High-Performance Liquid Chromatography coupled to Quadrupole-Time-of-Flight Mass Spectrometry)

Through process No. 04/09149-8 of the Multiuser Equipment Program (EMU) of FAPESP, an Alliance 2695 HPLC coupled to a Q-ToF Micromass Mass Spectrometer (Manchester, UK) was acquired for innovation and development of research at the School of Food Engineering, mainly in the area of Food Toxicology through studies of veterinary drug residue determination in food matrices.

The QToF mass spectrometer is a highly versatile and widely applicable instrument. The use of an ESI (electrospray) ionization source with a Q-ToF MS configuration provides high sensitivity and high resolution, making it up to 100 times more sensitive than other triple quadrupole instruments. The ToF working principle consists of analyzing and identifying ions by measuring the time it takes for ions to travel from the point of their generation to a detector. Ions are characterized by their mass-to-charge ratios (m/z). Considering that mass resolution is proportional to flight time, the longer the path the ions travel, the higher the analyzer’s resolution. In other words, the resolution of these analyzers increases as the flight tube is lengthened. However, in a very long flight tube, the performance of these analyzers may decrease due to ion scattering losses.

Technical Specification
HPLC – Alliance 2695 model composed of:

  • Column heater allowing the column to be maintained from 20°C to 60°C;

  • Autosampler with capacity for 120 samples;

  • Sample Heater/Cooler allowing samples in the autosampler to be kept within a temperature range of 4°C to 40°C;

  • Quaternary Pump System;

  • Inline Degasser;

QToF-MS – Micromass

  • Ionization source by ESI or APCI

  • Lockspray source

  • Two hexapoles and one quadrupole (hQh) as ion focalizers

  • Orthogonal ToF with resolution of 5000

  • MCP detector

  • Operation modes: full scan, MSMS product ion scan, and MSMS precursor ion scan

  • Micromass MassLynx Software

 

Responsible Researcher:

  • Prof. Dr. Felix Guillermo Reyes Reyes – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP

Associated Researchers:

  • Prof. Dr. Suzanne Rath – Dep. of Analytical Chemistry – IQ – UNICAMP
  • Prof. Helena Teixeira de Godoy – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP

Coordinators of Complementary Projects:

  • Prof. Francisco Benedito T. Pessine – Dep. of Physical Chemistry – IQ – UNICAMP
  • Prof. Dr. José Teixeira Filho – Dep. of Water and Soil – Faculty of Agricultural Engineering – UNICAMP
  • Prof. Dr. Adriana Vitorino Rossi – Dep. of Analytical Chemistry – IQ – UNICAMP
  • Prof. Hélia Harumi Sato – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Young Kun Park – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Nelson Horácio Pessoa Garcia – Dep. of Food Technology – FEA – UNICAMP
  • Rosiane Lopes da Cunha – Dep. of Food Engineering – FEA – UNICAMP
  • Lucia Regina Durrant – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Maria Isabel Rodrigues – Dep. of Food Engineering – FEA – UNICAMP
 
  • Department of Food Science (DCA)
  • Department of Food Engineering (DEA)
  • Department of Food Technology (DTA)
  • Department of Physical Chemistry (DFQ)
  • Department of Analytical Chemistry (DQA)
  • da Silva J.K., Cazarin, C.B.B., Colomeu T.C., Batista A.G., Meletti L.M.M., Paschoal J.A.R., Júnior S.B., Furlan M.F., Reyes F.G.R., Augusto F., Júnior M.R.M., de Lima Z.R. Antioxidant activity of aqueous extract of passion fruit (passiflora edulis) leaves: in vitro and in vivo study. Food Research International, v. 1, p. 1-9, 2013.
  • Sismotto M., Paschoal J.A.R., Teles J.A., Estaiano R.A.R., Reyes, F.G.R. A simple liquid chromatography coupled to quadrupole time of flight mass spectrometry method for macrolide determination in tilapia fillets. Journal of Food Composition and Analysis, v. 2014, p. 153-162, 2014.
  • Oliveira R.C., Paschoal J.A.R., Reyes F.G.R. Streptomycin and dihydrostreptomycin residues in bovine milk from the Brazilian retail market. Food Additives and Contaminants: Part B: Surveillance, v.3, p. 156-162, 2010.
  • Paschoal J.A.R., Quesada S.P., Gonçalves L.U., Cyrino J. E. P., Reyes, F.G.R. Depletion study and estimation of the withdrawal period for enrofloxacin in pacu (Piaractus mesopotamicus). J. vet. Pharmacol. Ther., v.35, p. 90-96, 2012. (doi: 10.1111/jvp.12043).
  • Quesada, S. P., Paschoal, J.A.R., Reyes, F.G.R. A simple method for the determination of fluoroquinolone residues in tilapia (Oreochromis niloticus) and pacu (Piaractus mesopotamicus) employing LC-MS/MS QToF. Food Additives & Contaminants. Part A. Chemistry, Analysis, Control, Exposure & Risk Assessment, p. 1-14, 2013.
  • Paschoal, J.A.R., Reyes, F.G.R., Rath, S. Determination of quinolone residues in tilapias (Orechromis niloticus) by HPLC-FLD and LC-MS/MS QToF. Food Additives & Contaminants. Part A. Chemistry, Analysis, Control, Exposure & Risk Assessment (Print), v. 26, p. 1331-1340, 2009.
  • Peres, G.T., Airoldi F.P.S., Reyes, F.G.R . Medicamentos veterinários na apicultura: metodologias analíticas para a determinação de resíduos no mel. Revista Brasileira de Toxicologia, v. 20, p. 21-28, 2007.

Management Committee:

  • Prof. Dr. Felix Guillermo Reyes Reyes – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Prof. Dr. Glaucia Maria Pastore – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Prof. Helena Teixeira de Godoy – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP

Users Committee:

  • Dr. Patricia de Campos Braga – Dep. of Food Science – FEA – UNICAMP
  • Prof. Dr. Suzanne Rath – Dep. of Analytical Chemistry – IQ – UNICAMP

STATE UNIVERSITY OF CAMPINAS – UNICAMP
SCHOOL OF FOOD ENGINEERING – FEA
DEPARTMENT OF FOOD SCIENCE – DCA

Rua: Monteiro Lobato, 80 – Cidade Universitária “Zeferino Vaz”
Neighborhood: Barão Geraldo – Campinas/SP
ZIP Code: 13083-862

Phone: +55 (19) 3521-2167

E-mail: pbraga@fea.unicamp.br

EMU 2018/23752-1

Acquisition of EMU – Chromatography System Coupled to Mass Spectrometer

The HPLC-MS System was granted under FAPESP process 2013/07914-8 and converted into a multiuser equipment in the second semester of 2018 (EMU 2018/23752-1). The equipment is installed in the Food Chemistry Laboratory of the Department of Food Science at the School of Food Engineering (DCA-FEA-UNICAMP), under the responsibility of Prof. Adriana Zerlotti Mercadante.

As EMU, the equipment is operated by a research professional with a higher education degree. For analyses, participants of the FoRC project are exempt from payment. Other users must pay a fee intended for maintenance, replacement of gases, filters, and oil, as well as consumables required for the proper functioning of the equipment. Payment is made via Funcamp. The cost of analyses is provided upon request, and the budget will be prepared based on the information provided in the analysis request form. After budget approval by the requester, it will be necessary to complete a form to register the research project (educational and research institutions) or company. The budget will be provided only after submission of the completed analysis request form.

The equipment consists of a high-performance liquid chromatography system coupled to diode array or fluorescence detectors and mass spectrometry:

  • High-speed liquid chromatography system, Shimadzu Prominence UFLC, LC-20AD model, composed of: high-pressure pump with dual parallel piston mechanism, flow range 0.0001 to 10.0 mL/min, working pressure range 1.0 to 40 MPa; online membrane degasser DGU-20A3R for up to 3 channels; column oven CTO-20A operating from 10 to 85 °C with ± 0.1 °C precision; Rheodyne injector; automatic sampler SIL-20AHT and controller CBM 20A. PDA (photodiode array) detector SPD-M20A model, operation range 190 to 800 nm (simultaneous operation) or up to 8 selectable fixed wavelengths; flow cell 10 mm optical path, 10 μL volume, 0.1 nm precision, 1 nm resolution. Fluorescence detector (FL) RF-20A model (220 V), RAMAN sensitivity S/N 1200, time constant 1.5 s, operation range 200 to 650 nm, 12 μL cell volume. LabSolution Multi-PDA Software.

  • Mass Spectrometry System, Bruker Daltonics, amaZon Speed model, Ion Trap mass analyzer. Equipped with electrospray (ESI), atmospheric pressure chemical ionization (APCI), and atmospheric pressure photoionization (APPI) sources. Nitrogen generator NM32LA, Peak Scientific brand. Compass Data Analysis Software.

Currently, the following analyses are performed:

  • Quantitative and qualitative analysis of carotenoids (both in saponified extract): separation is performed on a C30 column using a mobile phase gradient of methyl tert-butyl ether (MTBE) and methanol. The method is described in De Rosso & Mercadante J. Agric. Food Chem., 55, 5062, 2007.

  • Qualitative analysis of carotenoid esters: separation is performed on a C30 column using a mobile phase gradient of methyl tert-butyl ether (MTBE), methanol, and water. Methods are described in Rodrigues et al. J. Chromatogr. A, 1457, 116, 2016; Petry & Mercadante, J. Agric. Food Chem., 64, 8207, 2016.

To request the budget and analyses, please fill out the form below and send it to the e-mail emu3lqa@unicamp.br.
 
Form Link
 
For analyses, participants of the FoRC project are exempt from payment. Other users must pay a fee intended for maintenance, replacement of gases, filters, and oil, as well as consumables required for proper equipment operation. Payment is made via Funcamp. The cost of analyses is provided upon request, and the budget will be prepared based on the information provided in the analysis request form. After budget approval by the requester, it will be necessary to complete a form to register the research project (educational and research institutions) or company. The budget will be provided only after submission of the completed analysis request form.

In the second semester of 2018, the equipment began to be managed as multiuser through the Management Committee and Users Committee.

The Management Committee, composed of researchers Adriana Z. Mercadante (UNICAMP), Neuza H. Aymoto (USP), and Neura Bragagnolo (UNICAMP), is responsible for evaluating requests for equipment use upon submission of the required documents.

The Users Committee, composed of researchers Guilherme M. Tavares (UNICAMP) and Lilian R. B. Mariutti (UNICAMP), is responsible for continuous verification of users.

For further information, please contact emu3lqa@unicamp.br.

EMU 09/51580-1

Acquisition of Semi-Preparative and Analytical HPLC with Diode Array and Fluorescence Detector

The enzyme transglutaminase (TG), which catalyzes inter- or intramolecular cross-linking reactions in various proteins, has also been used to reduce the antigenicity of food proteins.

The combination of enzymatic hydrolysis with TG-mediated polymerization is a still little-explored strategy, but it offers promising perspectives for reducing protein antigenicity.

Cow’s milk contains proteins capable of inducing immune responses, among them β-lactoglobulin (β-Lg), which is one of the most antigenic. Work in progress in our laboratories has shown that β-Lg polymerization by TG is promoted both by prior heat treatment and when the reaction occurs in the presence of Cys; however, the antigenic response, assessed by ELISA and Immunoblotting tests, was significantly reduced when the protein was polymerized in the presence of Cys.

This result, although very promising, still requires clarification, especially regarding the characterization of polymers and antigenic determinants in the structure of the modified protein. Additionally, it is necessary to explore ways to further reduce the antigenicity of this protein. Therefore, this project aims to obtain and characterize β-Lg polymerized by TG and β-Lg polymerized pre- and post-enzymatic hydrolysis with different proteases and evaluate the effect of these processes on β-Lg antigenicity.

AGILENT 1200 LIQUID CHROMATOGRAPHY SYSTEM – SEMI-PREPARATIVE AND ANALYTICAL:

  • Quaternary gradient pump with degasser

  • Thermostatic column compartment

  • Diode Array Detector

  • Fluorescence Detector

  • Automatic Sampler with extended injection volume

  • Set for multiple injections

  • Analytical Fraction Collector Series 1200

  • Chemstation LC 3D workstation including LC command and data processing software (G2170BA) and spectral software (G2180BA)

Responsible Researchers

 

STATE UNIVERSITY OF CAMPINAS – UNICAMP
SCHOOL OF FOOD ENGINEERING – FEA
DEPARTMENT OF FOOD AND NUTRITION – DEPAN

Central Instrumental Laboratory
Department of Food and Nutrition
School of Food Engineering
State University of Campinas – UNICAMP
Rua: Monteiro Lobato, 80 – Cidade Universitária “Zeferino Vaz”
Neighborhood: Barão Geraldo – Campinas/SP
ZIP Code: 13083-862

Phone: +55 (19) 3521-8471
E-mail: fmnetto@unicamp.br, carraro@unicamp.br

EMU 2017/12015-3

O equipamento multiusuário de cromatografia de íons adquirido através do Processo 2017/12015-3 é vinculado ao Projeto Temático FAPESP - Processo 2014/21252-0, ambos sob responsabilidade do Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles. No escopo do Projeto Temático FAPESP, o equipamento será utilizado para análise de ânions orgânicos (formiato, acetato, propionato, butirato, valerato e hexanoato) associados à oxidação de óleos e biodieseis. As concentrações desses ânions serão determinadas em amostras lipídicas estocadas por longo período em diferentes condições de armazenamento e, também, após a oxidação induzida das amostras lipídicas, utilizando temperatura elevada e fluxo de oxigênio. Além disso, o cromatógrafo de íons será utilizado para quantificar cátions (sódio, cálcio, magnésio e potássio) e ânions (cloreto, fosfato, nitrato, sulfato, entre outros), presentes em óleos e biodieseis, para verificar o efeito do processamento do óleo ou síntese do biodiesel na extração/perda desses compostos e seu eventual efeito sobre o produto final. Com relação à síntese de biodiesel, serão realizados estudos para quantificar glicerol e etanol, viabilizando o estudo da cinética da reação de transesterificação que será estudada em diferentes condições físicas e químicas.

Configuração
O sistema ofertado compreende os equipamentos e acessórios listados abaixo:
  • Cromatógrafo de íons modular 940 Professional IC Vario;
  • Detector de condutividade;
  • Detector amperométrico;
  • Amostrador automático 858 Professional Sample Processor;
  • Sistema de preparo de amostras por diálise;
  • Software MagIC Net Professional para controle completo do sistema com atualizações gratuitas;
  • Acessórios necessários para instalação das aplicações.
940 Professional IC Vario
Este equipamento possui duas bombas de alta pressão que podem ser utilizadas para realização de duas análises simultâneas e independentes, sendo uma delas com detecção amperométrica e a outra com detecção de condutividade.
O cromatógrafo de íons possui um sistema de supressão química com função de reduzir a condutividade dos eluentes, aumentando a sensibilidade do detector para identificar os analitos. Além deste, está inclusa supressão sequencial de CO2 para melhorar ainda mais a sensibilidade do equipamento.
 
Detector de condutividade
O detector de condutividade é o mais utilizado para as aplicações de cromatografia de íons. Diferentes colunas e eluentes de composições variadas podem ser utilizados para o atendimento de diversas aplicações.
 
Detector amperométrico
O detector amperométrico é bastante seletivo e atende diversas aplicações da cromatografia de íons. O detector acompanha célula amperométrica com eletrodo de trabalho de Ouro e eletrodo de referência de estado sólido de Paládio. Outros eletrodos poderão ser adicionados futuramente para o desenvolvimento de novas aplicações.
 
858 Professional IC Sample Processor
O amostrador automático é equipado com rack de 148 posições de amostras e três posições de limpeza que auxiliam no preparo de amostras inline. Este amostrador poderá ser utilizado nas duas análises simultâneas realizadas pelo cromatógrafo 940 Professional Vario IC. As duas análises serão completamente independentes, pois o amostrador automático é capaz de intercalar as injeções dos dois métodos, otimizando muito o tempo. Estas análises podem ser iniciadas ou finalizadas sem interferência de uma para outra. O amostrador automático acompanha sistema de preparo de amostras por diálise que funciona através do princípio de migração iônica por diferença de concentração através de uma membrana. Este sistema é indicado para remoção de partículas, colóides, emulsões, gorduras e proteínas das amostras.
Pesquisador responsável
  • Prof. Dr. Antonio J. A. Meirelles – FEA/UNICAMP
Pesquisadores principais
  • Christianne Elisabete da Costa Rodrigues – FZEA/USP
  • Pedro de Alcântara Pessôa Filho – EP/USP
  • Roberto de Campos Giordano – UFSCAR
  • Centro de Ciências Exatas e de Tecnologia – CCET/UFSCAR
  • Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária – EMBRAPA
  • Escola de Engenharia de Lorena – EEL-USP
  • Escola de Química – EQ/UFRJ
  • Escola Politécnica da Universidade de São Paulo – EP/USP
  • Faculdade de Ciências Farmacêuticas de Araraquara – FCFAR/UNESP
  • Faculdade de Engenharia de Alimentos – FEA/UNICAMP
  • Faculdade de Engenharia Química – FEQ/UNICAMP
  • Faculdade de Zootecnia e Engenharia de Alimentos – FZEA/USP
  • Instituto de Ciências Ambientais, Químicas e Farmacêuticas – ICAQF/UNIFESP
  • Instituto de Química – IQ/UNB
  • Instituto de Química – IQ/UNESP
  • Instituto de Química – IQ/UNICAMP
  • Universidade Tecnológica Federal do Paraná – UTFPR
Comitê gestor
  • Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles – FEA/UNICAMP
  • Prof. Dr. Guilherme José Maximo – FEA/UNICAMP
  • Profa. Dra. Louise Emy Kurozawa – FEA/UNICAMP
Comitê de usuários
  • Prof. Dr. Eduardo Augusto Caldas Batista – FEA/UNICAMP
  • Profa. Dra. Klicia Araújo Sampaio – FEA/UNICAMP
  • Prof. Dr. Marcus Bruno Soares Forte– FEA/UNICAMP
Laboratório de Extração, Termodinâmica Aplicada e Equilíbrio - EXTRAE
Departamento de Engenharia de Alimentos - DEA
Faculdade de Engenharia de Alimentos - FEA
Universidade Estadual de Campinas - UNICAMP
Prof. Dr. Antonio José de Almeida Meirelles
Rua. Monteiro Lobato, 80
CEP 13083-862; Campinas - SP
Telefone: (19) 3521-4056

EMU 2018/03822-5

Plano de Gestão e Compartilhamento – Equipamento Multiusuário - Sistema de Cromatografia Äkta Pure – GE Healthcare

O de cromatografia preparativa Äkta Pure foi concedido no processo FAPESP 2018/03822-5 e está instalado no Laboratório de Química de Alimentos do Departamento de Ciência de Alimentos da Faculdade de Engenharia de Alimentos (DCA-FEA-UNICAMP), sob a responsabilidade do Prof. Guilherme Miranda Tavares.

Como EMU, o equipamento é operado por uma profissional de pesquisa de nível superior. Os usuários deverão pagar uma taxa destinada à manutenção e reposição de peças, além dos materiais de consumo necessários para o bom funcionamento do equipamento. O pagamento da taxa é realizado via Funcamp. O valor das análises é disponibilizado mediante consulta e o orçamento será feito de acordo com as informações fornecidas no formulário de solicitação de análise. Após a validação do orçamento pelo interessado, será necessário o preenchimento de um formulário para cadastro do projeto de pesquisa (instituições de ensino e pesquisa) ou da empresa. O orçamento será fornecido somente após o envio do formulário de solicitação de análise preenchido.

Sistema de cromatografia preparativa Äkta Pure 25 da marca GE Healthcare é compatível com uma grande gama de técnicas cromatográficas permitindo a purificação de proteínas e peptídeos da escala do micrograma ao grama. O sistema está equipado com:

- Detector UV (280 nm)

- Coletor automático de frações.

- Bombas que podem operar com vazões de até 25 mL min-1 e pressões de até 20 Mpa.

- Software Unicorn

- Cromatografia preparativa por exclusão de tamanho para proteínas do soro de leite, realizada em coluna HiPrep 26/60 Sephacryl S-200 (GE Healthcare – Life Sciences) e eluição isocrática com tampão fosfato 50 mM pH 7. Nesta análise o limite de injeção é de 13 mL de amostra, e o coletor de frações pode ser utilizado para a coleta dos picos observados.

- Cromatografia analítica por exclusão de tamanho em coluna BioSep SEC-S3000 (300 mm x 7,8 mm, 5μ) e eluição isocrática com tampão fosfato 50 mM pH 7.

- Demandas especiais devem ser tratadas diretamente com os responsáveis pelo equipamento.

Para solicitar o orçamento e as análises, favor preencher o formulário abaixo e enviar ao e-mail emu3lqa@unicamp.br.

Link do formulário

Os usuários deverão pagar uma taxa destinada à manutenção e reposição de peças, além dos materiais de consumo necessários para o bom funcionamento do equipamento. O pagamento da taxa é realizado via Funcamp. O valor das análises é disponibilizado mediante consulta e o orçamento será feito de acordo com as informações fornecidas no formulário de solicitação de análise. Após a validação do orçamento pelo interessado, será necessário o preenchimento de um formulário para cadastro do projeto de pesquisa (instituições de ensino e pesquisa) ou da empresa. O orçamento será fornecido somente após o envio do formulário de solicitação de análise preenchido.

Comitê Gestor:

Prof. Guilherme M. Tavares – DCA – FEA – UNICAMP

Profa. Lilian Regina Barros Mariutti – DEPAN – FEA – UNICAMP

Profa. Neura Bragagnolo – DCA – FEA – UNICAMP

 

Comitê de Usuários:

Prof. Ruann Janser Soares de Castro – DCA – FEA – UNICAMP

Prof. Naaman Francisco Nogueira Silva – UFSCar

Profa. Rosana Goldbeck – DEA – FEA – UNICAMP

Para maiores informações, entre em contato pelo e-mail:

emu3lqa@unicamp.br.

EMU 2015/24351-2

Microscópio de fluorescência Carl Zeiss Axioscope foi concedido pela FAPESP como equipamento multiusuário vinculado ao auxílio à pesquisa Jovem Pesquisador 2015/24351-2.

O microscópio de fluorescência Carl Zeiss Axioscope foi concedido pela FAPESP como equipamento multiusuário vinculado ao auxílio à pesquisa Jovem Pesquisador 2015/24351-2 sob a responsabilidade do prof. Dr. Douglas Fernandes Barbin.

O equipamento será alocado no Laboratório de Inovação em Alimentos do Departamento de Engenharia de Alimentos da Faculdade de Engenharia de Alimentos (DEA/FEA) da UNICAMP.

O microscópio com sistema de fluorescência Carl Zeiss Axioscope tem sistema de iluminação transmitida de 100W, campo claro, com câmera Axiocam e suporte para 2 lâminas.

É um equipamento versátil com várias aplicações na aquisição de imagens.

 

 

AXIOSCOPE 5

 

MICROSCÓPIO TRINOCULAR COM ILUMINAÇÃO TRANSMITIDA COM LED PARA CAMPO CLARO, CAMPO ESCURO E CONTRASTE DE FASE, 6 OBJETIVAS, OCULARES FOCALIZÁVEIS 

ILUMINAÇÃO REFLETIDA COM LÂMPADA DE MERECÚRIO DE 50 W PARA FLUORESCÊNCIA, 6 CONJUNTOS DE FILTROS FL, CÂMERA DIGITAL COLORIDA, COM SENSIBILIDADE PARA

TODAS AS TÉCNICAS DE MICROSCOPIA, RESOLUÇÃO DE 2.8 Mb, SENSOR CCD, MARCA CARL ZEISS, ALEMANHA.

Gerenciamento e Política de Uso

O equipamento será gerido por dois comitês distintos e independentes: (i) Comitê Gestor e (ii) Comitê de Usuários

O Comitê Gestor será responsável por gerenciar a utilização do equipamento, bem como seu funcionamento, traçando um histórico de utilização. Este comitê será igualmente responsável pelo julgamento das solicitações de uso do equipamento mediante a apresentação de propostas por parte dos solicitantes.

O Comitê de Usuários, por sua vez, será responsável pela verificação contínua de acesso e uso do equipamento. Este comitê, munido do histórico de utilização, subsidiará o relatório anual a ser preparado pelo Comitê Gestor.

Os Comitês serão formados pelos pesquisadores:

- Comitê Gestor:

Prof. Dr. Douglas Fernandes Barbin (DEA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Nathália Cirone (DCA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Miriam Dupas Hubinger (DEA/FEA/Unicamp)

- Comitê de Usuário:

Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha (DEA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Carolina Siqueira Franco Picone (DEPAN/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Liliana Rocha (DCA/FEA/Unicamp)

Terão acesso ao equipamento pesquisadores e docentes de Instituições de Ensino e Pesquisa Públicas, Instituições de Ensino e Pesquisa Privadas e Empresas, usuários oriundos de Instituições Públicas deverão prover os materiais de consumo necessários para a execução do experimento e/ou arcar com as despesas para sua execução.

Para usuários de Instituições ou Empresas privadas será necessária a formalização de Convênios de Cooperação.

Para a utilização do equipamento, os solicitantes deverão preencher formulário específico disponível no site da FEA/UNICAMP, na seção “FAPESP – Equipamentos Multiusuários” (http://intranet.fea.unicamp.br/EMU201524351/).

Após análise e aprovação por parte do Comitê Gestor, o solicitante será comunicado para agendamento de treinamentos e utilização, conforme cada solicitação.

Plano de Gestão e Compartilhamento

Comitê Gestor:

Prof. Dr. Douglas Fernandes Barbin (DEA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Nathália Cirone (DCA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Miriam Dupas Hubinger (DEA/FEA/Unicamp)

 

Comitê de Usuário: 

Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha (DEA/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Carolina Siqueira Franco Picone (DEPAN/FEA/Unicamp)

Profa. Dra. Liliana Rocha (DCA/FEA/Unicamp)

EMU 2019/27354-3

EMU concedido no Processo 2019/27354-3: Microfluidizador, da marca Microfluidics, modelo LM20.

EMU concedido no Processo 2019/27354-3: Microfluidizador, da marca Microfluidics, modelo LM20.

O equipamento multiusuário Microfluidizador é vinculado ao Projeto Temático FAPESP - Processo 2019/27354-3, sob responsabilidade da Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha.

No escopo do Projeto Temático FAPESP, o equipamento Microfluidizador será utilizado para a produção de emulsões.

Microfluidizador, marca Microfluidics, modelo LM20, com taxa de fluxo nominal de 80 a 100 mL/min (água),

volume mínimo de amostra de 12 mL e pressão de trabalho máxima de 2.068 bar (30.000 psi).

Condições de uso

  • As restrições prévias sobre a condição das amostras são relacionadas à existência de material particulado em suspensão e o tamanho médio de partícula.
     
  • Será cobrado um valor para a manutenção do equipamento a ser calculado de acordo com a quantidade de amostras e tempo de uso do equipamento.
     
  • O usuário deverá passar por treinamento prévio para poder realizar a operação do equipamento, o qual será agendado de acordo com a disponibilidade da equipe responsável pelo treinamento.
     
  • A possibilidade do Laboratório de Engenharia de Processos executar as análises para o usuário será avaliada pelo Comitê Gestor.
     
  • O usuário deverá obrigatoriamente informar o número do Processo EMU (EMU FAPESP 2019/27354-3) nos agradecimentos dos trabalhos publicados, nos quais o equipamento Microfluidizador foi utilizado.

 

Modo de Operação e acesso dos Usuários

O usuário deverá passar por treinamento prévio para poder realizar a operação do equipamento, o qual será agendado de acordo com a disponibilidade da equipe responsável pelo treinamento.

A possibilidade do Laboratório de Engenharia de Processos executar as análises para o usuário será avaliada pelo Comitê Gestor.

O usuário deverá obrigatoriamente informar o número do Processo EMU (EMU FAPESP 2019/27354-3) nos agradecimentos dos trabalhos publicados, nos quais o equipamento Microfluidizador foi utilizado.

Comitê Gestor

  • Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha – FEA/UNICAMP
     
  • Profa. Dra. Miriam Dupas Hubinger – FEA/UNICAMP
     
  • Profa. Dra. Ana Carla Kawazoe Sato – FEA/UNICAMP

 

Comitê de Usuários

  • Profa. Dra. Caroline Joy Steel – FEA/UNICAMP
     
  • Profa. Dra. Helena Maria André Bolini – FEA/UNICAMP
     
  • Profa. Dra. Liliana de Oliveira Rocha – FEA/UNICAMP

Pesquisador responsável

Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha – FEA/UNICAMP

 

Pesquisador principal

Miriam Dupas Hubinger

 

Pesquisadores associados

Ana Carla Kawazoe Sato – FEA/UNICAMP

Ana Carolina de Aguiar – FEA/UNICAMP

Ana M. R. Pilosof – Universidad de Buenos Aires

Ana Paula Badan Ribeiro – FEA/UNICAMP

Andresa Gomes Brunassi – FEA/UNICAMP

António Augusto Vicente – Universidade do Minho

Carolina Siqueira Franco Picone – FEA/UNICAMP

Catarina Gonçalves – International Iberian Nanotechnology Laboratory

Douglas Fernandes Barbin – FEA/UNICAMP

Guilherme de Figueiredo Furtado – FEA/UNICAMP

Lorenzo Miguel Pastrana Castro – International Iberian Nanotechnology Laboratory

Louise Emy Kurozawa – FEA/UNICAMP

 Luiz Henrique Fasolin – FEA/UNICAMP

Marise Aparecida Rodrigues Pollonio – FEA/UNICAMP

Miguel Ângelo Parente Ribeiro Cerqueira – International Iberian Nanotechnology Laboratory

Monise Helen Masuchi Buscato – FEA/UNICAMP

Paula Jauregi – University of Reading

Paula Kiyomi Okuro – FEA/UNICAMP

 

Universidades / Institutos participantes

Faculdade de Engenharia de Alimentos – FEA/UNICAMP

International Iberian Nanotechnology Laboratory – INL

Universidad de Buenos Aires – UBA

Universidade do Minho – UMINHO

University of Reading – UR

Laboratório de Engenharia de Processos - LEP

Faculdade de Engenharia de Alimentos - FEA Universidade Estadual de Campinas - UNICAMP

Profa. Dra. Rosiane Lopes da Cunha

Rua. Monteiro Lobato, 80

CEP 13083-862; Campinas - SP

Telefone: (19) 3521- 4047

E-mail: rosiane@unicamp.br